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士鋒蛋白定量Commassie法和BCA法比較

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Commassie法(Bradford法):

原理:在酸性條件,蛋白質與考馬斯染料G-250結合,顏色從棕色變為藍色,在595nm處檢測吸光值然后與標準曲線對比,即可計算出待測蛋白的濃度。

BCA法:

原理:在堿性條件下,蛋白將Cu++還原為Cu+,Cu+與BCA試劑形成紫色絡合物,測定其在562nm處的吸收值,并與標準曲線對比,即可計算待測蛋白的濃度。

現對這兩種方法進行比較:

一、實驗材料:

細胞總蛋白提取試劑盒(AR0103)

M231

BCA蛋白定量試劑盒(AR0146)

Commassie改良增強型蛋白質定量試劑盒(AR0145)

二、操作步驟:

Commassie法:

1.將BSA凍干標準品(10mg/支)用生理鹽水或PBS稀釋成2000ug/ml,1000 ug/ml,500 ug/ml,250 ug/ml,125 ug/ml,62.5 ug/ml,31.25 ug/ml,15.625 ug/ml八個濃度的蛋白標準溶液。

2.M231用細胞總蛋白提取試劑提取總蛋白。

3.各取20ul蛋白標準品和待測M231樣品至相應標記的微孔板中。

4.滴加200ul考馬斯增強型試劑(溶液A)至每孔混勻并充分震蕩30S

5.停止震蕩,在室溫孵育樣品10min

6.在酶標儀中測量595nm時的吸光值。

7.繪制標準曲線,再用標準曲線判斷出樣品的蛋白濃度。

BCA法:

1.按50體積BCA試劑A加入1倍體積BCA試劑B配置適量BCA工作液,充分混勻。

2.將BSA凍干標準品(10mg/支)用生理鹽水或PBS稀釋成2000ug/ml,1000 ug/ml,500 ug/ml,250 ug/ml,125 ug/ml,62.5 ug/ml,31.25 ug/ml,15.625 ug/ml八個濃度的蛋白標準溶液。

3.M231用細胞總蛋白提取試劑提取總蛋白。

4.各取20ul蛋白標準品和待測M231樣品至相應標記的微孔板中。

5.滴加200ulBCA工作液至每孔混勻并充分震蕩30S

6.停止震蕩,在37度孵育樣品30min

7.在酶標儀中測量562nm時的吸光值。

8.繪制標準曲線,再用標準曲線判斷出樣品的蛋白濃度。

三、實驗結果

 1234567
Commsie法吸光值0.5300.5220.431
 
0.2620.1180.041
 
0.001
 
BCA法吸光值0.8120.4440.257
 
0.140
 
0.060.037
    
0.017
 

 
其中1到8為2000ug/ml,1000,500,250,125,62.5,31.25,15.625的標準濃度的BSA蛋白,9為空白孔,樣品1為8倍稀釋M231總蛋白,樣品2為32倍稀釋M231總蛋白

Commassie法: 

 

為了測試準確,應在試劑加入后的5~20min內測定光吸收,因為在這段時間內顏色是zui穩定的。 由標準曲線可以算出樣品原始濃度為14.4mg/ml

Commassie法優點是:

1.靈敏度高,據估計比Lowry法約高四倍,其zui低蛋白質檢測量可達1ug。這是因為蛋白質與染料結合后產生的顏色變化很大,蛋白質-染料復合物有更高的消光系數,因而光吸收值隨蛋白質濃度的變化比Lowry法要大的多。

2.測定快速、簡便,只需加一種試劑。完成一個樣品的測定,只需要5分鐘左右。由于染料與蛋白質結合的過程,大約只要2分鐘即可完成,其顏色可以在1小時內保持穩定,且在5分鐘至20分鐘之間,顏色的穩定性。

3.干擾物質少。如干擾Lowry法的K+、Na+、Mg2+離子、Tris緩沖液、糖和蔗糖、甘油、巰基乙醇、EDTA等均不干擾此測定法。

此法的缺點是:

1.由于各種蛋白質中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此Bradford法用于不同蛋白質測定時有較大的偏差,在制作標準曲線時通常選用g—球蛋白為標準蛋白質,以減少這方面的偏差。

2. 仍有一些物質干擾此法的測定,主要的干擾物質有:去污劑、Triton X-100、十二烷基硫酸鈉(SDS)和0.1M的NaOH。(如同0.1M的酸干擾Lowary法一樣)。

3. 標準曲線也有輕微的非線性,在0-1000ug/ml濃度范圍內有較好線性。因而不能用Beer定律進行計算,而只能用標準曲線來測定未知蛋白質的濃度。
BCA法: 
 


由標準曲線可以算出樣品原始濃度為14.28mg/ml

BCA法特點:    1. 靈敏度高,檢測濃度下限達到25μg/ml,zui小檢測蛋白量達到0.5μg,待測樣品體積為1-20μl 。    2. 測定蛋白濃度不受絕大部分樣品中的去污劑等化學物質的影響,可以兼容樣品中高達5%的SDS,5%的Triton X-100,5%的Tween 20,60,80。    3. 在20-2000μg/ml濃度范圍內有良好的線性關系。    4. 檢測不同蛋白質分子的變異系數遠小于考馬斯亮藍法蛋白定量。  5. 受螯合劑和略高濃度的還原劑的影響:EDTA小于10mM。DTT小于1mM巰基乙醇低于1mM

BCA法和Commassie法各有優勢,在不知道蛋白樣本緩沖液成分的情況下可以兩種方法配合使用,以消除定量的誤差。

 

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