光合細菌培養基Ⅰ特殊培養法
二倍體細胞培養法與一般培養相同，關鍵在于傳代，其傳代程序為：
1.吸除舊培養液注入另瓶中。
2.用溫BSS沖洗1次。
3.用0.25%溫*消化，加入消化液量以僅覆蓋細胞層即可；作用1~5分鐘。
4.待細胞附著松動、細胞質邊緣卷起和間隔加大，便終止消化。為防止細胞丟失,可不必再用BSS沖洗,直接向瓶中加入培養液（新舊培養液按2：1新舊混合）。
5.輕輕反復吹打制成單個細胞懸液。
6.按一分為二比例接種培養。
使用飼細胞(Feeder Cells)。制備方法：
1.取原代培養的人或動物胚胎成纖維細胞，90%匯合時制成細胞懸液，再按105細胞/毫升重新接種培養。
2.在細胞半匯合時，準備0.25μg/ml的絲裂霉素C，按2μg/106細胞的量加入到培養瓶中過夜；或用射線單次照射，劑量30～50戈瑞。
3.細胞經上述處理后，Hanks液漂洗兩次、更換培養液、再培養24小時，*消化細胞制成懸液，按5×104（104細胞/cm2）接種入新光合細菌培養基Ⅰ中。
4.48小時后，即可用于細胞克隆之用。
細胞分離（克隆）培養
多孔塑料培養板單細胞克隆法：
1.消化：取健康待克隆細胞，吸出瓶內培養液，加消化液。
2.低密度細胞懸液的制備：做克隆細胞時首先需先用消化法制備出分散成單個細胞懸液，然后稀釋細胞，使之成為1~2細胞/毫升懸液，zui適宜細胞密度為1~2細胞/ml培養液。
3.接種：先用吸管輕輕吹打細胞懸液，使混懸均勻，繼用加樣器向塑料培養板每孔內加0.5毫升。接種時要迅速準確，爭取在zui短時間內加完，以免培養液蒸發，然后迅速蓋好蓋板，置CO2溫箱培養。
4.標記：培養6~12小時后，待細胞下沉冰貼附于培養板孔底后，從溫箱中取出，置倒置光顯微鏡臺上，觀察和標記下含有單個細胞的孔，置CO2溫箱培養。在培養中一般無需換液，只有在細胞增長過于緩慢時才可進行換液。換液時先吸除舊培養基，但不要吸除過多，余少許，以免細胞干涸。然后再迅速補加新鮮克隆培養液，繼續培養3~4周。待孔內細胞增至500~600個時，可進行分離培養。
5.分離擴大培養：培養86~96小時后進行觀察。挑選生長良好的單細胞克隆孔，先吸除舊培養液，用Hanks洗1~2次，繼加*少許，加入量已能覆蓋細胞群即可，如過多，應吸除多余消化液。置于倒置顯微鏡下窺視，待發現細胞變圓時，加入0.1ml含10%血清的克隆培養基，用吸管輕輕吹打，當細胞離開底物懸浮后，一并吸入管內，移入另瓶或皿中，再補加一定量克隆培養液，置CO2溫箱中繼續培養、增殖，使之形成新的細胞群后，即轉用常規培養法培養。
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