安徽，簡稱“皖”，省會合肥，位于中國大陸東部，介于東經114°54′-119°37′，北緯29°41′-34°38′之間，公元1667年因江南省東西分置而建省。得名于“安慶府”與“徽州府”字。

安徽襟江帶淮，沿江通海，經濟繁榮，教育發達。地跨長江、淮河南北，與江蘇、浙江、湖北、河南、江西、山東接壤，東西寬約450公里，南北長約570公里，土地面積13.94萬平方公里，占全國的1.45%。地形地貌由淮北平原、江淮丘陵、皖南山區組成，境內湖泊星羅棋布，新安江穿行而過，是典型的山水江南、魚米之鄉。^[1]

安徽是中國*文明的重要發祥地，擁有淮河文化、廬州文化、皖江文化、徽文化四大文化圈。徽商是中國古代三大商幫之一，明清時期，安徽商人就將貿易拓展到了東南亞、日本以及歐洲，留下“無徽不成商”的美名。安徽自古重視科研教育，擁有敢闖創新的精神基因，是國家技術創新工程試點省、綜合性國家科學中心、國家產業創新中心。2017年1月18日，由安徽中國科大主導研發的世界首顆量子科學實驗衛星“墨子號”發射成功。

安徽與江蘇、上海、浙江共同構成的長江三角洲城市群已成為6大城市群之一。2014年，獲得中國zui幸福的省份榮譽，被列入中國*新型城鎮化試點省份。2015年，安徽省正式邁入中等偏上收入的快速發展階段

    安徽省一體化醫院污水處理設備新技術

本公司專業生產銷售：地埋式一體化污水處理設備、醫院污水處理設備、城鎮污水處理設備、農村一體化污水處理裝置、景區污水設備、服務站生活污水設備、工廠生活污水處理設備、地埋式污水處理設備、二氧化氯發生器、AB投加器、消毒設備、加藥裝置、氣浮機、一體化污水處理設備、次氯酸鈉發生器

     醫院污水指醫院門診、病房、手術室、各類檢驗室、病理解剖室、放射室、洗衣房、太平間等處排出的診療、生活及糞便污水。當辦公、食堂、宿舍等排水與上述污水混排出時亦視為醫院污水。醫院污水含有大量致病微生物，具有傳染性等危害，一般來說污水中含菌總量達1億個/mL以上。其中致病微生物在環境中具有較強的抵抗力，當人們食用或接觸被細菌、病毒、寄生蟲卵或有毒、有害物質污染的水或食物時，易引起傳染病。

福建省福州一體化醫院污水處理設備標準排放

        醫院污水概述
1.按產生來源分為：診療室、化驗室、病房、洗衣房、X光照像洗印、動物房、同位素治療診斷、手術室等排水；醫院行政管理和醫務人員排放的生活污水，食堂、單身宿舍、家屬宿舍排水

2.按水質屬性分為
（1）生活污水：所占比重大，水質與普通生活污水相似。
（2）特殊廢水：包括實驗室、手術室、化驗室、解剖室、藥劑室排出的污水，含有重金屬、消毒劑、有機物質、酸、堿等有毒有害物質。
（3）放射性廢水：放射性診斷、治療及試驗研究過程中排放的含有放射性同位素的廢水。

醫院污水處理設備的特點

1)占地小，集成自動化程度高，穩定性強，無需專人值守；
2)出水水質優，可達到GB18466-2005《醫療機構水污染物排放標準》3)安裝調試方便，根據使用說明書操作，常溫氣候一周即可滿負荷運行；4)污泥產量小或不產污泥（可忽略）；5)建設周期短，土建工程量小；
6)運行費用低，噸污水處理費用在0.4～0.8元；7)
綜合建設成本低，500m3/d以下規模性價比高；
安裝

A、設備起吊：本設備內壁有四塊供起吊的孔板。
B、設備的標高是根據工程需要可架空安裝，也可放置在平地。C、設備地基保持水平，設備混凝土基礎尺寸（見圖)。D、清水區放空口、分離區放空口和混合區放空口需加閥門。
E、污水進口與反應池的連接管道，要求越短越好，以免絮體在管道中被打碎。F、污泥出口可接到污泥儲槽，連接的管道、彎頭不易多，管道越短越好。G、電器箱放置位置：一般以安全、方便操作為原則。可放在扶梯的側面及就近
位置，但是應注意防潮、防濕、防止腐蝕性氣體損壞電器元件。接線：電柜的接線端與設備的接線盒應按所標的相同號碼相接。

日常巡查及設備維護
1）定期檢查空壓機與水泵的填料及潤滑系統，經常加油。2）根據生化池的情況觀察微生物的生長情況
3）經常觀察產水水質，如果發現出水水質發黃，則證明出水氨氮存在超標的風險;如發現產水量變小，則證明MBR膜可能存在污堵；
4）經常檢查風機的工作情況，使其控制在一定的范圍，以保證具有充分的氧氣5）定期對水樣進行檢測

   安徽省一體化醫院污水處理設備新技術

福建省福州一體化醫院污水處理設備標準排放

、服務范圍
設備免費質保2年，核心配件質保5年，終身提供
售前服務：免費制作方案，為客戶提供詳細的解決思路；免費現場勘測，因地制宜制作設備售中服務：專業人員全程跟進，及時溝通；免費提供平面布置、設備基礎資料、土建設施圖，系統設備的用電、水、氣等工藝配置要求；免費安裝
售后服務：專業人員全程跟進，及時溝通；免費提供平面布置、設備基礎資料、土建設施的管件預設、系統設備的用電、水、氣等工藝配置要求
醫院污水處理設備的好壞關系到出水水質是否達標，環保驗收能否通過及設備回收成本等諸多問題，如需獲取詳細價格、工程案例、工藝流程、配置清單等資料，請與我公司，

福建省福州一體化醫院污水處理設備標準排放

一體化醫療污水處理設備適用范圍：
各級別綜合性醫院廢水處理； 各類專科醫院廢水處理； 口腔門診、鄉鎮衛生院、衛生室等醫療機構廢水處理。

核心工藝簡介
污水處理系統采用成熟的接觸氧化工藝(A/O)，工藝將前段缺氧段和后段好氧段串聯在一起，在缺氧段（A段）異養菌將污水中可溶性有機物水解為有機酸，使大分子有機物分解為小分子有機物，不溶性的有機物轉化成可溶性有機物，將蛋白質、脂肪等污染物進行氨化（有機鏈上的N或氨基酸中的氨基）游離出氨（NH 3 、NH 4 + ）。在好氧段（O段）存在好氧微生物及自養型細菌（硝化菌），其中好氧微生物將有機物分解成CO 2 和H 2 O；在充足供氧條件下，自養菌的硝化作用將NH 3 -N（NH 4 + ）氧化為NO 3 - ，通過回流控制返回至A池，在缺氧條件下，異養菌的反硝化作用將NO 3 - 還原為分子態氮（N 2 ）完成C、N、O在生態中的循環，實現污水無害化處理。

系列醫院污水處理設備適用于醫院污水、化驗室、等。采用一體化裝置，zui大程度減少占地面積，采用紫外線滅菌器、 脫氯設施等系列*設備與*的醫院污水處理工藝相結合，出水量從10m³/d 到200m³/ d的處理規模滿足了大多醫療機構的廢水處理需求。

針對醫療垃圾廢水、醫院污水的特點，該設備還采用了除磷脫氮、螺旋磁化、引氣氣浮等多項技術。采用改良型接觸氧化法工藝，具有容積負荷高、體積小、節能高效、便于操作等特點。

為滿足廣大客戶的需求，污水寶根據水質及排水量大小設計出不同型號的產品，客戶可根據實際情況進行選擇。

 污水回用的處理工藝

       污水回用是解決我國水資源短缺的主要途徑，消毒是保證污水回用衛生學安全的主要工藝，紫外消毒具有廣譜的殺菌作用，且較少形成消毒副產物

[1, 2]，生態風險小，已經成為污水回用的常用消毒方法. 紫外消毒的作用機理是在波長為200-300 nm的紫外線照射下，微生物DNA分子上的胸腺嘧啶形成嘧啶二聚體，抑制了基因的轉錄和翻譯過程

[3]，從而殺死細胞. 目前，污水回用紫外消毒的研究主要集中在水質對消毒效果的影響[4]，而紫外消毒對微生物的作用主要集中在飲用水處理方面[

5, 6]. 污水中微生物濃度相對較高，含有多種病原菌包括沙門氏菌、 分枝桿菌、 軍團菌等[7]，此外二級出水中化學污染物的濃度相對較高，成分相對復雜

[4]，因此紫外消毒對水中微生物的影響與飲用水不同. 目前，水環境細菌的檢測仍以培養法為主. 無法較好地指示活性菌的存在，qPCR技術能夠較好地指示細菌的存在，但無法區分活性菌與非活性菌，高估了樣品中活性病原菌的濃度進而無法很好地評估污水回用的風險

[8]. RNA半衰期較短，在非活性菌內會快速降解而在活性體內穩定存在，可以很好地指示活性菌的存在. 有學者建立的基于RNA的Q-RT-PCR技術能快速、 靈敏地檢測活性菌[9]. 已有研究中，通過揭示二級出水中微生物(特別是病原菌)群落結構，進而考察紫外消毒對污水回用中主要活性病原菌存在情況的研究較少.

　　鑒于此，本研究首先采用454焦磷酸測序技術，分析二級出水中微生物(特別是病原菌)群落結構特性，揭示二級出水中常見的幾種病原菌; 然后采用培養法、 qPCR及Q-RT-PCR方法考察了紫外消毒對該污水廠二級除水中指示菌(大腸桿菌)和病原菌(沙門氏菌、 分枝桿菌)的去除特性，以期為污水回用中病原菌的去除工藝提供一些參考，保障污水回用的衛生學安全.

　　1 材料與方法

　　1.1 樣品采集及實驗設置

　　本研究樣品采自南方某生活污水處理廠二級出水，該廠采用傳統活性污泥法，二級處理采用空氣曝氣活性污泥法，該廠進水與出水的水質參數情況如表 1所示. 二級出水的取樣體積為5 L. 樣品取好后放置于采樣箱(內置冰塊)中，于2 h內運回實驗室，1 L水樣用于群落結構分析. 共采樣5次.

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　　表 1 本實驗用再生水的水質參數

　　紫外消毒對病原菌的影響在實驗室進行. 紫外輻射采用超凈臺中的紫外燈管(蘇信凈化設備生產廠，產品型號：YJ 1320)進行. 經紫外輻射計測定，本研究采用的紫外燈管對實驗中水樣放置區域的紫外照射強度均勻. 實驗中采用校準的紫外輻射計對玻璃杯處的紫外強度為 0.1mW ·cm-2. 將1.5 L水樣倒入2L燒杯中，放入磁性轉子，將燒杯放在磁力攪拌器上，打開超凈臺的紫外燈，使得水樣接受紫外照射. 實驗所需的紫外線劑量(mJ ·cm-2)=紫外線強度(mW ·cm-2)×照射時間(s).

　　《城鎮給排水紫外線消毒設備》標準(GB/T 19857-2005)規定：城鎮生活飲用水的技術標準為40 mJ ·cm-2，中水回用的技術標準為80 mJ ·cm-2，城鎮污水的技術標準為15 mJ ·cm-2(一級B標準)，城鎮污水的技術標準為20 mJ ·cm-2(一級A標準). 紫外線消毒設備應用于城市雜用水、 景觀環境用水時，應分別達到GB-T 18920和GB-T 50335中的衛生學指標要求. 再生水作為景觀環境用水時糞大腸菌群要求小于200 CFU ·L-1. 本研究中，設定紫外線劑量20、 40、 60、 80 mJ ·cm-2時，分別用培養法檢測糞大腸菌群的濃度水平，考察不同紫外劑量對本樣品中微生物的去除水平，以選擇合適的紫外劑量.

　　經選擇，考慮經濟成本，zui終設定紫外線劑量為60mJ ·cm-2，即照射時間為10 min. 照射后在黑暗條件下放置12 h. 本實驗在室溫環境下進行，反應終止后采用培養法和qPCR及Q-RT-PCR檢測消毒前后大腸桿菌、 沙門氏菌及分枝桿菌的濃度.

　　1.2 二級出水中微生物多樣性分析

　　1.2.1 DNA的提取

　　將1L水樣經醋酸纖維素濾膜過濾，將過濾下的物質于濾膜一同轉入15 mL無菌離心管中，加入10 mL滅菌后的PBS在漩渦振蕩器上洗脫過濾截留的顆粒物. 將濾膜取出，離心管置于4℃離心10 min，轉速設為10 000 r ·min-1(日立,型號：CF16RN). 棄去上清液，將底部物質轉移到2 mL離心管中，于4℃離心5 min，轉速為12 000 r ·min-1. 棄去上清液，管內留500 μL液體進行DNA的提取. DNA提取采用FastDNA@ Spin Kit for Soil(MP Biomedicals，產品編號：6560200)試劑盒，具體操作過程按說明書進行. zui后得到DNA體積為50 μL.對得到的DNA進行純化，采用Universal DNA 純化回收試劑盒(天根，產品編號：DP214). 提取后的DNA用于454焦磷酸測序.

　　1.2.2 PCR擴增

　　PCR擴增區域為細菌16S rRNA的V1-V3區，擴增長度為500 bp. 上游引物為：27F：5′- 融合 A-標簽-CA接頭-AGAGTTTGATCMTGGCTCAG-3′，下游引物為：533R：5′- 融合 B-TC 接頭-TTACCGCGG CTGCTGGCAC-3′. 為了區分同一體系中的不同樣品，在引物前端加入一個10 bp的標簽. PCR反應體系為50 μL：5×FastPfu Buffer 10 μL; 2.5 μmol ·L-1 dNTPs 5 μL; 5 μmol ·L-1上下游引物2 μL; FastPfu Polymerase 1 μL; DNA模板100-200 ng; 其余用雙蒸水補足50 μL. PCR擴增反應程序為：先95℃ 2 min; 然后進行30個循環(95℃ 30 s，55℃ 30 s，72℃ 30 s),zui后72℃ 10 min. 將PCR產物進行2%瓊脂糖凝膠電泳在500 bp位置處檢測到條帶，將PCR產物用TaKaRaMiniBEST Agarose Gel DNA Extraction凝膠回收試劑盒(TaKaRa，產品號：9762)回收PCR產物. 采用分光光度計測定DNA的濃度及質量(Nanodrop-2000c).

　　1.2.3 454文庫構建和測序

　　應用高通量測序平臺GS 454 FLX Titanium(美國Roche公司)對標記的PCR產物進行測序. 測序完成后對所得序列進行處理，處理原則如下：①檢測標簽的完整性，棄去標簽不完整的序列(即使只有一個堿基對發生錯誤); ②棄去片段長度低于200 bp的序列; ③去除尾部質量數低于20的末端序列; ④保證每個樣品系列中80%以上堿基的序列質量數大于20[10].

　　1.2.4 測序結果分析及分類學分析

　　對1.2.3節得到的有效序列比對至SILVA數據庫的16S rRNA序列上，去除目標區域以外的序列. 利用mothur軟件，根據每組中的重復序列，去除嵌合體序列，通過對RDP數據庫中的PDS序列進行比對，排除葉綠體、 線粒體、 古細菌、 真核序列的干擾. 根據序列的相似性，將之歸為多個OUT. 選擇相似水平為0.03的進行后續分析,構建稀疏曲線. 利用mothur軟件計算樣本的Chao豐度指數，Shannon多樣性指數，Simpson多樣性指數，覆蓋度指數及Pielou均勻度指數.

　　1.3 細菌的檢測 本研究中選擇常用的指示菌大腸桿菌作為目標指示菌. 對測序結果進行分析，zui終選擇沙門氏菌和分枝桿菌作為待檢測的病原菌. 分別采用培養法、 qPCR及Q-RT-PCR方法檢測水樣中細菌的濃度水平.

　　1.3.1 培養法

　　大腸桿菌、 沙門氏菌及分枝桿菌的培養法檢測參考文獻[11]進行.

　　1.3.2 DNA提取

　　消毒前病原菌的分析采用1.2.1節提取得到的DNA. 消毒后濃縮1L待測樣品，提取過程按照1.2.1節進行.

　　1.3.3 qPCR

　　(1)qPCR引物及探針的選擇

　　本研究中大腸桿菌和分枝桿菌的qPCR檢測采用SYBR® Green qPCR. 采用Taqman® qPCR定量檢測沙門氏菌. 所采用的目的基因和相應引物序列見表 2.  

　　表 2 定量PCR采用的目的基因和相應引物序列

　　(2)qPCR標準品的制備

　　標準品采用質粒標準品，制作方法參見文獻[15]，制備含有uidA、 invA和hsp65基因的質粒DNA.

　　大腸桿菌標準品構建過程中采用大腸桿菌和與uidA基因相應的引物，沙門氏菌和與invA基因相應的引物，分枝桿菌標準品的構建采用分枝桿菌和hsp65基因相應的引物，目標基因經PCR擴增之后將特異性產物連接入pCR 2.1-TOPO載體(Invitrogen) 中，經過酶切鑒定測序分析和質粒提取等步驟獲得大腸桿菌DNA標準品. 采用核酸蛋白儀測量DNA的濃度. 將得到的質粒DNA按10倍梯度稀釋，制得qPCR標準品.

　　(3)qPCR測定

　　大腸桿菌及分枝桿菌qPCR(TaKaRa，Code：DRR041A)反應體系為(20 μL)：SYBR® Premix Ex TaqTM 10 μL，上下游引物各0.5 μL(終濃度0.25 μmol ·L-1)，DNA(標準品或樣品)5 μL，雙蒸水4 μL. 沙門細菌qPCR(TaKaRa，Code：DRR039A)反應體系為(25 μL)：Premix Ex TaqTM 12.5 μL，上下游引物各2.5 μL(終濃度1.0 μmol ·L-1)，Taqman® 熒光探針1 μL(終濃度0.25 μmol ·L-1)，DNA(標準品或樣品)5 μL，雙蒸水1.5 μL補足體積至25 μL.

　　大腸桿菌反應程序如下：1個循環：95℃，1 min; 40個循環：95℃，20 s; 60℃，20 s; 72℃，15 s(收集熒光); 熔解曲線的過程為：95℃，1 min，從60℃開始每30 s溫度升高0.5℃，總共進行71個循環，結束溫度為95℃，反應結束之后4℃保存.

　　沙門氏菌反應程序如下：1個循環：95℃，10 min; 40個循環：95℃，20 s; 60℃，30 s; 72℃，25 s(收集熒光); 不設置熔解曲線，反應結束之后4℃保存.

　　分枝桿菌反應程序如下：1個循環：94℃，1 min; 40個循環：94℃，60 s; 60℃，60 s; 72℃ 60 s(收集熒光); 熔解曲線過程為同大腸桿菌.

　　每次定量PCR反應都設空白對照(以相同體積的雙蒸水取代DNA)，每次測定設2個平行樣.

　　1.3.4 Q-RT-PCR

　　Q-RT-PCR標準品的制備參考文獻[7].

　　樣品的濃縮參照1.2.1. RNA的提取采用Fast RNA® Pro Soil-Direct Kit(MP Biomedical，產品編 號：116070050).

　　2 結果與討論 2.1 二級出水中微生物群落結構組成 2.1.1 微生物多樣性分析

　　通過對5個批次樣品16S rRNA基因文庫進行焦磷酸測序，經修剪去雜后，共獲得1 128、 1 299、 1 292、 1 019和1 462條優化序列，序列平均長度為545 bp. 將優化序列截齊后與SILVA比對后進行聚類，在97%相似性下分別獲得252、 264、 375、 315和554 OTUs，稀疏曲線如圖 1所示. 從中可知，當測序數量超過1 000時，仍有新的OUT可被測出. 稀疏曲線隨測序序列增加趨向平坦，表明本研究樣本取樣量合理. 表 3列出了α多樣性分析各樣品的多樣性指數.