很多老師在設(shè)計科研實驗的時候都會很迷茫，到底用什么細(xì)胞好？ 越來越多的老師開始傾向于原代細(xì)胞的科研實驗，在設(shè)計實驗中，原代細(xì)胞和細(xì)胞株到底該怎么選擇呢？

原代細(xì)胞的定義：

原代細(xì)胞的培養(yǎng)是指直接從機(jī)體取下細(xì)胞、組織和器官后立即進(jìn)行培養(yǎng)。因此，較為嚴(yán)格地說是指成功傳代之前的培養(yǎng)，此時的細(xì)胞保持原有細(xì)胞的基本性質(zhì)，如果是正常細(xì)胞，仍然保留二倍體數(shù)。但實際上，我們通常把第1代至第十代以內(nèi)的培養(yǎng)細(xì)胞統(tǒng)稱為原代細(xì)胞培養(yǎng)。

原代細(xì)胞因為可以模擬機(jī)體的功能，主要用于：生物醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)如藥物篩選、藥物代謝和毒理研究、癌癥藥物的研究

下面我們整理了一些培養(yǎng)原代細(xì)胞的小知識：

解凍

原代細(xì)胞對解凍過程非常敏感，因此將小瓶置于37℃水浴鍋中，保持并輕輕旋轉(zhuǎn)直到內(nèi)容物剛剛解凍是很重要的。然后應(yīng)立即從水浴中取出小瓶，并轉(zhuǎn)移到無菌操作臺。確保您的培養(yǎng)瓶在解凍前已經(jīng)準(zhǔn)備就緒，以便可以立即用于接種細(xì)胞，并置于培養(yǎng)箱中，我們在使用cell systems的原代視網(wǎng)膜內(nèi)皮細(xì)胞時，復(fù)蘇的時候沒有去離心，第二天換個液就可以。

傳代

原代細(xì)胞有間隙抑制接觸不良反應(yīng)，所以細(xì)胞不能到達(dá)百分100的密度的時候傳代，一般蕞有效的建議觀察細(xì)胞的生長周期，Cell Systems的原代細(xì)胞在細(xì)胞密度達(dá)到85%左右的時候傳代蕞佳，當(dāng)生長至100-％匯合時，它就會衰老。記住，所有的原代細(xì)胞不是100-％純，因此我們要盡量減少污染細(xì)胞的生長。當(dāng)細(xì)胞傳代時，使用低濃度的胰蛋白酶，并在顯微鏡下密切監(jiān)測細(xì)胞。此外，記得在胰蛋白酶消化后*中和細(xì)胞中的胰酶，因為任何活性的胰蛋白酶都將損傷細(xì)胞。

凍存

通常我們不推薦重新凍存原代細(xì)胞，因為這可以促進(jìn)細(xì)胞衰老和/或?qū)е鹿δ茏兓Ｔ?xì)胞非常敏感，重新凍結(jié)可能導(dǎo)致細(xì)胞死亡或損傷。

與細(xì)胞系不同，原代細(xì)胞增殖有限，我們建議盡早使用原代細(xì)胞進(jìn)行實驗以防止遺傳漂移，如果你正在使用一個增殖困難的細(xì)胞類型，你應(yīng)該密切監(jiān)測細(xì)胞形態(tài)，因為少量混雜的細(xì)胞（如成纖維細(xì)胞）可能隨著時間的推移，大量生長從而成為主要細(xì)胞。

正常的原代細(xì)胞培養(yǎng)，在無污染的情況下，建議培養(yǎng)基中不加抗體，抗體會影響細(xì)胞的某些基因變異從而導(dǎo)致實驗數(shù)據(jù)有差異，所以cell systems的細(xì)胞在分離提取時就考慮到這點，他們不會采用任何抗體去分離和純化的同時，通過酶消化或者離心洗滌的方法讓細(xì)胞達(dá)到95%以上的純度，這樣得到的實驗數(shù)據(jù)更為準(zhǔn)確。