古朵生物：質粒DNA提取及瓊脂糖凝膠電泳檢測

　　一、堿變性法提取質粒DNA

　　質粒(Plasmid)是細菌染色體外能自身獨立復制的雙股環狀DNA。帶有遺傳信息，可賦予細菌某些新的表型。將質粒指紋圖譜分析方法、質粒DNA探針技術及檢測質粒的PCR技術用于臨床感染性疾病的診斷和流行病學調查已成為現實。質粒作為載體在基因工程中起著重要的作用。

　　分離和純化質粒DNA的方法很多，但這些方法基本包括三個步驟：即細菌的培養和質粒DNA的擴增，細菌菌體的裂解;質粒DNA的提取與純化。

　　本實驗學習用堿變性方法提取質粒DNA。

　　原理

　　細菌培養物加入SDS和NaOH堿性溶液處理后，菌體裂解，可使細菌的質粒DNA、染色體DNA和RNA一起從細胞內釋放出來，經瓊脂糖凝膠電泳，因各種核酸分子的遷移率不同將上述核酸分成不同的帶。用溴化乙錠(EB)染色后，在紫外線燈下可看到各種核酸帶發出的熒光。根據熒光的位置，可區分不同的核酸帶。

　　材料

　　1.菌株E.coliJM109(pUC19)，E.coliRRI(pBR322)

　　2.試劑溶液Ⅰ(50mM葡萄糖，25mMTris.HclPH8.0，10mMEDTA)

　　溶液II(0.2NNaOH，1%SDS)用前新配制

　　溶液III(5mMKAc溶液PH4.8)

　　TE緩沖液(10mMTris.HCl，1mMEDTAPH8.0)

　　LB液體培養基(胰蛋白胨10g，酵母粉5g，Nacl10g。加蒸餾水溶解，用NaOH調PH至7.5，加水至1000ml，15磅高壓滅菌15分鐘)。

　　方法

　　1.接種細菌于5mlLB液體培養基中，37℃培養過夜。

　　2.3000rpm/min，離心15min，棄上清。加入100ul溶液Ⅰ懸起細菌沉淀。

　　3.加入200ul前新配制的溶液II，顛倒EP管5次混合均勻，置冰浴2min。

　　4.加入150ul溶液III溫和地混勻，12000rpm/min,離心5min。

　　5.吸取上清清亮裂解液放入另一新EP管中，加等體積酚-氯fang-異wu醇抽提2次，12000rpm/min，離心2min。(若不做酶切，此步可省略)吸取上清放入另一新EP管中，加入二倍體積的冷乙醇，12000rpm/min，離心10min。

　　6.棄乙醇，干燥后用30ulTE緩沖液洗下核酸，待電泳檢測。

　　二、瓊脂糖凝膠電泳

　　瓊脂糖凝膠電泳技術(Agarosegelelectroghoresis)是分離、鑒定和提純DNA片斷的有效方法。凝膠分辨率決定于使用材料的濃度，并由此決定凝膠的孔徑。瓊脂糖凝膠可分辯0.1~6.0kb的雙鏈DNA片段。瓊脂糖凝膠電泳是一個電場作用。它首先利用瓊脂糖的分子篩效應，此外，在弱堿性條件下，DNA分子帶負電荷，從負極向正極移動。根據DNA分子大小、結構及所帶電荷的不同，它們以不同的速率通過介質運動而相互分離。借助溴化乙錠(EB)能與雙鏈DNA結合的作用，利用EB染色，并通過紫外線激發即可觀察被分離DNA片段的位置。

　　材料

　　1.瓊脂糖、10×TAE電泳緩沖液(40mMTris，20mMNaAc，1mMEDTAPH8.0)

　　2.載體緩沖液(0.25%溴酚藍，30%甘油)、溴化乙錠水溶液(10mg/ml)

　　3.凝膠槽、電泳儀

　　方法

　　1.取瓊脂糖0.9g，加入100ml1xTAE電泳緩沖液于250ml燒瓶中，100℃加熱溶解。

　　2.平衡凝膠槽，放好兩側擋板，調節好梳子與底板的距離(一般高出底板0.5~1mm)。

　　3.鋪板：在溶解好的凝膠中加入終濃度為0.5ug/ml的溴化乙錠水溶液，輕輕混勻，待冷至50℃左右倒入凝膠槽，膠厚一般為5~8mm。

　　4.待膠凝固后，去掉兩側擋板，將凝膠放入盛有電泳液的槽中(加樣孔朝向負，DNA由負極向正極移動)，使液面高出凝膠2~3mm，小心拔出梳子。

　　5.DNA樣品與載體緩沖液5：1混合并加入凹孔中(樣品不可溢出)。

　　6.打開電源，調節所需電壓，電壓與凝膠的長度有關，一般使用電壓不超過5v/cm。

　　7.據指示染料移動的位置，確定電泳是否終止(溴酚藍的涌動距離在5sRNA和0.3kbDNA帶之間)。

　　8.電泳完畢關閉電源。將凝膠放紫外燈下觀察并拍照。

　　瓊脂糖凝膠電泳上海古朵生物科技有限公司成立于上海浦東新區。是一家專門從事生物技術相關產品，勵志研發和銷售的綜合性生物公司，產品遠銷多個國家和地區，我們將一如既往地秉承“一切為了滿足客戶的需求"的經營宗旨;牢固樹立“以客戶需求為準則、以市場需求為導向，不斷開發高質量的新產品，提供客戶滿意的綜合服務質量"的方針。